大肠杆菌培养基配制及培养方法

一、菌种冻存液的制备

含有足量细菌的液体培养基离心后在沉淀中加入等量二、培养基制备

LB培养基配方（胰化蛋白胨（Trypton）：10 g/L；酵母提取物（Extract）：5 g/L；NaCl：10 g/L；pH 7.4）

液体培养基

胰化蛋白胨 10.0g 酵母粉 5.0g 氯化钠 10.0g 水 1000ml pH 7.4

固体培养基在液体培养基的基础上再加入1.5％－2.0％的琼脂三、平板的制备

1）称取胰化蛋白胨10.0g，酵母粉5.0g，NaCl 10.0g，加入800mL二次水溶解，并用玻璃棒搅拌均匀，用1mol/L的NaOH调pH至7.4左右，定容至1L，调pH 7.4（若溶液pH大于7.4，用1mol/L HCl回调）。

2）分装在锥形瓶中，每瓶量不宜太多，没过瓶底一指左右。如需固体培养基在

分装后的液体培养基内加入约2%的琼脂（150mL液体培养基加入2.5g琼脂）。3）在锥形瓶口依次覆盖带滤纸通气小孔的塑料膜和硬质纸，用皮筋捆好。所有

锥形瓶如上述操作。用记号笔注明培养基名称、配制日期。4）高压蒸汽灭菌锅121 oC灭菌15min。5）灭菌后的培养基取出置电热鼓风干燥器内60oC烘干，待锥形瓶的封口纸干燥

后取出。液体培养基可直接保存或使用，此时加有琼脂的培养基不会凝固，可在预先紫外杀菌30min以上的无菌操作台上，将培养基倒入培养皿内，每个培养皿培养基约10-15mL（直径90mm），在培养皿中厚度大约4mm左右。将平皿叠放在无菌操作台上，放置10min左右，待琼脂基本凝固可涂平板。6）若平板不直接使用，灭菌后将培养基在锥形瓶中保存，待需制备平板时，微

波炉中火加热约3min，使琼脂熔化，室温冷却20min至不烫手可制备平板。四、接种大肠杆菌

1）取实验室储备的大肠杆菌BL21冻存液，管口用酒精灯灼烧，打开离心管。2）接种方法一：用灭菌头蘸取冻存液在平板边缘上划横条，每三道为一组，

旋转平皿一圈，最后中间划之字；接种方法二：用移液吸取100uL溶液于平板上，用酒精灯灭菌厚的涂抹棒划十字，涂布平板。

3）因实验一般都要求挑取单菌落，故涂平板适应考虑冻存液内细菌数量，若菌

量过大应适当稀释。一般方法一获得单菌落的可能性比较大。涂平板应在酒

Yeast

40%甘油，-80C冻存。

o

精灯附近进行，若冻存液涂完的平板应倒置，防止平皿盖上产生水蒸气。五、大肠杆菌的培养

1）将接种好的平皿倒置放入37℃的恒温培养箱中培养，大约十几小时后长出菌落。

2）挑取生长状态好，特征明显的单个菌落，接种于新鲜灭菌的LB液体培养基中37℃，220rpm/min恒温振荡培养9-12h。菌落特征：乳白色，圆形，菌落边缘整齐，表面光滑，表面和背面颜色一致。